Quelles bactéries causent couramment les infections TPLO ?
Découvrez quelles bactéries provoquent les infections après une chirurgie TPLO et comment les prévenir efficacement.
Ce contenu est destiné aux professionnels de la santé animale à des fins éducatives. Il ne se substitue pas au jugement clinique ni à des conseils personnalisés. Fiez-vous toujours à votre formation, à votre expertise et au contexte spécifique de vos patients.

Les infections du site chirurgical TPLO ne sont pas causées par un seul pathogène.
Bien que Staphylococcus pseudintermedius prédomine, les données publiées sur les cultures des cas TPLO révèlent un spectre de bactéries, incluant des cocci à Gram positif, des bacilles à Gram négatif et des combinaisons polymicrobiennes.
Connaître le paysage bactérien informe à la fois la stratégie de prévention et les décisions empiriques d’antibiothérapie en attendant les résultats des cultures.
Réponse rapide : S. pseudintermedius est le pathogène TPLO le plus courant, suivi de S. aureus. Les données publiées identifient également Enterococcus, les staphylocoques à coagulase négative, Actinomyces et Corynebacterium. Les organismes à Gram négatif apparaissent davantage dans les infections chroniques ou polymicrobiennes. Les souches MDR surviennent dans 20 à 40 % des isolats staphylococciques TPLO.
Points clés
- S. pseudintermedius est le pathogène TPLO prédominant : le commensal cutané canin le plus fréquent ; le portage préopératoire de MRSP (4,4 % des chiens TPLO) augmente le risque d’ISS de 6,7 fois selon les données PubMed
- S. aureus est le deuxième isolat le plus fréquent : cliniquement significatif et avec des taux plus élevés de MDR (50 % dans l’étude PMC 769-TPLO contre 35,1 % pour S. pseudintermedius)
- Les bactéries à Gram négatif sont moins fréquentes mais cliniquement importantes : les données ResearchGate sur le retrait d’implants TPLO ont identifié Enterococcus spp. (n=3), des staphylocoques à coagulase négative (n=5) et d’autres organismes non staphylococciques
- Pseudomonas aeruginosa est le Gram négatif le plus courant dans les infections de plaies canines : intrinsèquement résistant à de nombreuses classes d’antibiotiques, formant des biofilms, et particulièrement difficile dans les infections d’implants
- Les souches MDR surviennent dans 20 à 40 % des isolats staphylococciques TPLO : la sélection empirique d’antibiotiques est peu fiable ; une thérapie dirigée par culture est requise pour toutes les infections TPLO confirmées
- Les infections polymicrobiennes compliquent le traitement : plusieurs espèces avec des susceptibilités différentes peuvent nécessiter des schémas combinés
Bactéries à Gram positif dans les infections TPLO
Staphylococcus pseudintermedius
Le pathogène dominant dans les infections TPLO canines. S. pseudintermedius est un staphylocoque à coagulase positive qui colonise la peau, les narines et la région périnéale des chiens sains sans provoquer de maladie.
Lorsque la barrière cutanée chirurgicale est rompue, il est idéalement positionné pour pénétrer dans la plaie.
Les données PubMed (549 chiens TPLO) confirment : 4,4 % des chiens étaient porteurs de MRSP avant la chirurgie. Le portage de MRSP était un facteur de risque d’ISS (OR 6,72 ; IC 95 % 2,12 à 21,4).
Le MRSP a été isolé dans 34 % des ISS confirmées par culture dans cette étude.
Étude PMC 769-TPLO : S. pseudintermedius (n=37) était l’isolat le plus fréquent globalement. 35,1 % des isolats de S. pseudintermedius étaient MDR.
Le S. pseudintermedius sensible à la méthicilline (MSSP) est généralement traitable avec des céphalosporines (par exemple, céphalexine) ou de l’amoxicilline-acide clavulanique. Le MRSP nécessite une sélection dirigée par culture à partir d’une gamme étroite d’agents efficaces.
Staphylococcus aureus
Moins fréquemment un commensal cutané canin que S. pseudintermedius, mais le deuxième isolat ISS TPLO le plus fréquent.
S. aureus est plus couramment associé à la peau humaine et est souvent acquis par les chiens par contact étroit avec l’homme.
Étude PMC 769-TPLO : S. aureus (n=10) était le deuxième isolat le plus fréquent. 50 % des isolats de S. aureus étaient MDR dans cette étude.
Rapport de cas PMC TPLO MRSA (Open Veterinary Journal 2021) : décrit une infection TPLO MRSA confirmée traitée par combinaisons de vancomycine et rifampicine.
Staphylocoques à coagulase négative
Étude ResearchGate sur le retrait d’implants TPLO (7,4 % des TPLO nécessitant un retrait d’implant) : a identifié des staphylocoques à coagulase négative hémolytiques (n=2) et non hémolytiques (n=3) parmi les cas confirmés d’infection d’implant.
Les staphylocoques à coagulase négative sont généralement moins virulents que S. pseudintermedius et S. aureus mais sont des formateurs significatifs de biofilm. Le biofilm sur les surfaces d’implant les rend particulièrement difficiles à éradiquer avec les seuls antibiotiques.
Espèces d’Enterococcus
Étude ResearchGate sur le retrait d’implants TPLO : Enterococcus spp. (n=3) identifiés parmi les infections confirmées d’implants TPLO.
Enterococcus faecalis fait partie de la flore gastro-intestinale normale des chiens. Il peut atteindre les plaies chirurgicales par dissémination hématogène (ensemencement sanguin à partir de l’intestin) ou par contamination pendant la période périopératoire.
SustainableVet.org confirme : Enterococcus faecalis peut infecter les plaques TPLO, fournissant des surfaces où les bactéries forment des biofilms, particulièrement difficiles à traiter et pouvant nécessiter le retrait de l’implant.
Enterococcus est intrinsèquement résistant à de nombreuses céphalosporines et à la clindamycine. Le traitement nécessite typiquement de l’amoxicilline-acide clavulanique, du linézolide ou des glycopeptides (vancomycine) selon la sensibilité.
Espèces d’Actinomyces et Corynebacterium
Étude ResearchGate sur le retrait d’implants TPLO : Actinomyces spp. (n=1) et Corynebacterium spp. (n=1) identifiés parmi les infections d’implants TPLO.
Ces organismes sont rares mais peuvent causer des infections de plaies indolentes et chroniques souvent manquées lors de cultures à incubation courte.
Bactéries à Gram négatif dans les infections TPLO
Les bactéries à Gram négatif sont moins fréquentes dans les ISS TPLO primaires que les staphylocoques à Gram positif mais sont surreprésentées dans les infections chroniques, réfractaires au traitement et polymicrobiennes.
Elles sont également plus susceptibles d’émerger après des traitements antibiotiques prolongés qui sélectionnent contre la flore à Gram positif.
Pseudomonas aeruginosa
L’organisme à Gram négatif cliniquement le plus significatif dans les infections de plaies canines en général. P. aeruginosa est un bacille à Gram négatif présent dans le sol, l’eau et l’environnement.
Ce n’est pas un commensal cutané normal mais il peut coloniser les plaies et les surfaces d’implants.
PMC (étude 769-TPLO) : des espèces d’Acinetobacter figuraient parmi les isolats MDR identifiés dans les cas d’ISS TPLO. P. aeruginosa est également représenté dans la littérature orthopédique canine plus large sur les ISS.
P. aeruginosa forme des biofilms, est intrinsèquement résistant à de nombreux antibiotiques (pénicillines, céphalosporines, clindamycine, chloramphénicol) et nécessite un test de sensibilité pour sélectionner des agents efficaces.
Les antibiotiques efficaces sur les souches sensibles incluent les pénicillines antipseudomonas, certains fluoroquinolones, aminoglycosides et carbapénèmes.
Espèces d’Acinetobacter
Étude PMC 769-TPLO : identifiées parmi les organismes MDR dans les cas d’ISS TPLO.
Acinetobacter baumannii est un organisme à Gram négatif capable d’une résistance étendue par plusieurs mécanismes, en faisant l’un des pathogènes les plus résistants au traitement en médecine humaine et vétérinaire.
Escherichia coli
Moins fréquemment impliqué dans les ISS TPLO primaires mais cause reconnue d’infections polymicrobiennes de plaies, particulièrement celles avec risque de contamination fécale ou chez les chiens immunodéprimés.
Infections polymicrobiennes
Les infections polymicrobiennes impliquant deux espèces ou plus simultanément compliquent le traitement car chaque espèce peut avoir des susceptibilités antibiotiques différentes.
L’étude PMC 769-TPLO a identifié des profils d’isolats mixtes dans une proportion de cas d’ISS TPLO. Les données ResearchGate sur le retrait d’implants TPLO ont également montré plusieurs organismes dans certaines infections confirmées.
Lorsque l’infection polymicrobienne est confirmée par culture, le schéma antibiotique doit couvrir tous les organismes identifiés. Cela nécessite fréquemment une thérapie combinée ou des agents à large spectre augmentant la complexité, le coût et le risque d’effets secondaires du traitement.
Pour le guide spécifique aux staphylocoques, voir est-ce que le staph est l’infection la plus courante après une chirurgie TPLO ?. Pour le guide MRSP et MRSA, voir le MRSP ou le MRSA peuvent-ils survenir après une chirurgie TPLO ?.
Pour le guide des antibiotiques, voir quels antibiotiques sont couramment utilisés pour les infections TPLO. Pour le guide des signes d’infection, voir signes et traitement des infections de plaque TPLO.
Questions fréquemment posées
Pourquoi les bactéries à Gram négatif posent-elles plus de problèmes malgré leur moindre fréquence dans le TPLO ?
Les bactéries à Gram négatif comme Pseudomonas aeruginosa et Acinetobacter ont une résistance intrinsèque à de nombreux antibiotiques, forment efficacement des biofilms et sont souvent sélectionnées par une antibiothérapie préalable.
Lorsqu’elles apparaissent, elles nécessitent fréquemment une prise en charge spécialisée et des agents à spectre étroit identifiés par tests de sensibilité.
Est-ce que l’espèce bactérienne spécifique influence la nécessité de retirer la plaque ?
Oui, indirectement. Les espèces formant des biofilms (S. pseudintermedius, staphylocoques à coagulase négative, P. aeruginosa) sont les organismes les plus susceptibles de coloniser la surface de la plaque, rendant le traitement antibiotique seul insuffisant et nécessitant le retrait de la plaque.
Les organismes ne formant pas de biofilm et causant uniquement des infections des tissus mous peuvent répondre aux antibiotiques sans retrait de la plaque.
À quelle vitesse la culture doit-elle être réalisée lorsqu’une infection TPLO est suspectée ?
La culture doit être réalisée avant le début des antibiotiques autant que possible. Une fois les antibiotiques commencés, le nombre de bactéries diminue rapidement, réduisant la sensibilité de la culture.
Si les antibiotiques ont déjà été commencés, consultez votre vétérinaire pour le meilleur moment et la méthode d’échantillonnage.
Une infection TPLO peut-elle être causée par des bactéries non listées ici ?
Oui. Les organismes listés représentent les pathogènes les plus couramment isolés dans les études publiées, mais les infections TPLO peuvent être causées par tout organisme environnemental ou commensal qui accède à la plaie.
C’est pourquoi la culture avec identification des espèces est essentielle : une sélection empirique d’antibiotiques basée uniquement sur la probabilité manquera les organismes atypiques.
Que faire si la culture revient « sans croissance » mais que la plaie semble infectée ?
Les cultures sans croissance peuvent refléter : des antibiotiques antérieurs supprimant le nombre bactérien, des organismes fastidieux nécessitant une incubation prolongée, des bactéries en biofilm ne se détachant pas dans les écouvillons, ou une technique d’échantillonnage inadéquate.
Discutez avec votre vétérinaire d’une culture répétée, d’un prélèvement tissulaire plus profond ou d’une biopsie si les résultats sans croissance ne correspondent pas au tableau clinique.
Ressources
- PMC. Infection du site chirurgical après 769 ostéotomies de nivellement du plateau tibial.pmc.ncbi.nlm.nih.gov
- ResearchGate. Taux de retrait d’implant suite à une infection après TPLO chez le chien.researchgate.net
- PubMed. Association entre le portage de MRSP et les ISS après TPLO chez le chien.pubmed.ncbi.nlm.nih.gov
- PMC. Traitement d’une infection MRSA après TPLO chez un chien.pmc.ncbi.nlm.nih.gov
- VCA Animal Hospitals. Ostéotomie de nivellement du plateau tibial (TPLO) chez le chien.vcahospitals.com
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