L'asepsie en chirurgie des tissus mous chez le chat

La chirurgie des tissus mous félins suit les mêmes principes d’asepsie que la chirurgie des tissus mous canins, mais nécessite des ajustements à plusieurs niveaux. Les chats diffèrent physiologiquement, anatomiquement et dans leur réponse à certains agents antiseptiques. Ces différences sont cliniquement significatives.

Ce que cela couvre : Le protocole d’asepsie périopératoire pour la chirurgie des tissus mous chez le chat, incluant les exigences spécifiques à la préparation du patient félin, les contraintes liées aux agents antiseptiques, l’application de la classification des plaies aux procédures félines courantes, la technique peropératoire et la gestion post-opératoire des plaies.Portée : S’applique à tous les chats subissant des interventions chirurgicales des tissus mous, de l’ovariohystérectomie élective à la chirurgie gastro-intestinale d’urgence, au drainage d’abcès et aux procédures des voies urinaires.Différences clés entre félins et chiens : Les chats sont plus sensibles à la chlorhexidine à haute concentration ; ils se toilettent eux-mêmes et peuvent ingérer des résidus d’antiseptique après l’opération ; la peau féline est plus délicate que la peau canine ; la suppression immunitaire liée au stress est un facteur cliniquement pertinent dans le risque d’infection du site opératoire (ISO) chez le chat.

Points clés à retenir

• Les principes fondamentaux de l’asepsie sont identiques à ceux des chiens ; les ajustements sont spécifiques aux agents et à l’anatomie.
• Le CHG est sûr pour les chats à des dilutions correctes ; le CHG concentré sur les plaies ou cavités ne l’est pas.
• Les chats se toilettent eux-mêmes ; tout antiseptique résiduel sur la peau accessible présente un risque d’ingestion.
• La peau féline est plus délicate ; la pression lors du rasage doit être réduite pour éviter les abrasions.
• La suppression immunitaire liée au stress chez le chat peut augmenter le risque d’ISO ; minimiser le stress avant l’opération.
• L’ovariohystérectomie (OHH) est la procédure des tissus mous la plus fréquente chez le chat ; l’asepsie est standard.
• La protection post-opératoire de la plaie (collier élisabéthain) est essentielle ; les chats peuvent accéder à plus de sites de plaies que les chiens.

Facteurs de risque spécifiques au patient félin

En plus des facteurs de risque standards d’ISO (classe de plaie, durée de la procédure, maladies concomitantes), les chats présentent des considérations spécifiques :

Infection rétrovirale

Le FIV (virus de l’immunodéficience féline) et le FeLV (virus de la leucémie féline) provoquent des degrés variables d’immunosuppression. Les chats rétroviraux positifs subissant une chirurgie ont potentiellement une défense immunitaire de la plaie altérée.

Le statut rétroviral préopératoire doit être connu avant une chirurgie élective. Pour les chats rétroviraux positifs, une surveillance post-opératoire renforcée est appropriée, et toute élévation de la classe de plaie (contamination non planifiée) nécessite une prise en charge plus agressive.

Stress et immunosuppression induite par les corticostéroïdes

Les chats soumis au stress (hospitalisation, manipulation, peur) produisent des corticostéroïdes endogènes élevés. Une élévation chronique des corticostéroïdes altère la fonction des neutrophiles et la défense immunitaire de la plaie.

Minimiser le stress préopératoire par :

• Réduction du temps d’hospitalisation avant chirurgie élective
• Protocoles de manipulation adaptés aux félins
• Prémédication anxiolytique lorsque cela est approprié

contribue à la prévention des ISO par la préservation de la fonction immunitaire.

Patients avec obstruction urétrale

Les chats mâles présentant pour une urétrostomie périnéale ou une cystotomie après obstruction urétrale ont souvent eu des cathéters urinaires en place et peuvent avoir une infection urinaire concomitante. Ces patients doivent être classés en classe II ou III selon les résultats de la culture d’urine, et des antimicrobiens thérapeutiques plutôt que prophylactiques peuvent être indiqués.

Préparation préopératoire : protocole spécifique au félin

Rasage

La peau féline est plus délicate que la peau canine. La pression du rasoir doit être réduite pour éviter les abrasions qui pourraient compromettre la fonction barrière de la peau.

Pour l’ovariohystérectomie :

• Approche médiane : raser du milieu du sternum jusqu’au pubis, avec extension latérale incluant les flancs bilatéraux
• Approche par le flanc : raser le flanc concerné de la dernière côte jusqu’au membre postérieur ; marges dorsales et ventrales généreuses

Pour les autres procédures des tissus mous :

• La zone rasée s’étend au minimum de 5 cm au-delà de l’incision prévue dans toutes les directions
• Utiliser une lame fine adaptée au pelage félin
• Rasage immédiat préopératoire ; ne pas raser la veille au soir

Antisepsie cutanée

Choix de l’agent :

Le gluconate de chlorhexidine (CHG) est approprié pour l’antisepsie cutanée chirurgicale féline aux bonnes concentrations :

• Friction chirurgicale : 2 % de CHG dans 70 % d’alcool éthylique ou isopropylique
• Solution finale : combinaison CHG-alcool à 2 % appliquée et laissée sécher complètement

Contraintes de sécurité du CHG pour les chats :

• Ne pas utiliser près des conduits auditifs : ototoxique
• Ne pas appliquer de CHG concentré sur les surfaces en contact avec la plaie ou les cavités : toxique pour les tissus aux concentrations chirurgicales
• Irrigation de la plaie si nécessaire : CHG à 0,05 % maximum (1 mL de CHG 5 % pour 99 mL d’eau stérile)
• Risque lié au toilettage post-opératoire : le CHG résiduel sur la peau accessible crée une exposition par ingestion ; l’utilisation du collier élisabéthain post-opératoire est particulièrement importante

La povidone iodée est appropriée pour la préparation chirurgicale ophtalmique et comme alternative pour les sites généraux où le CHG est contre-indiqué.

Technique d’application :

Friction centrifuge minimale en trois passages (du centre de l’incision vers l’extérieur ; jamais en sens inverse). Temps de contact : minimum 2 minutes pour les combinaisons CHG, 5 minutes pour la PVI. Évaporation complète avant le champ opératoire.

Pour la préparation antiseptique cutanée chez le chat, incluant le protocole complet d’antisepsie cutanée féline avec les preuves issues de l’étude circulaire vs. linéaire de 2024, ce guide couvre en détail le protocole spécifique au chat.

Classification des plaies pour les procédures courantes des tissus mous félins

Asepsie peropératoire : considérations félines

Maintien du champ stérile

Les principes standards du champ stérile s’appliquent tout au long de l’intervention. Les patients félins sont plus petits que la plupart des chiens, ce qui entraîne :

• Un champ opératoire plus petit nécessitant un drapage précis
• Moins d’espace mort dans la plupart des procédures, simplifiant la fermeture
• Des instruments à échelle différente : pinces fines, porte-aiguilles plus petits et fils plus fins

Ces différences ne modifient pas la norme d’asepsie. Chaque principe de gestion du champ stérile s’applique quelle que soit la taille du patient.

Manipulation des tissus

La manipulation atraumatique des tissus est particulièrement importante chez le chat. Les tissus félins, en particulier l’intestin, le mésentère et le tissu adipeux sous-cutané, sont plus fragiles que les tissus canins équivalents. Un traumatisme excessif augmente la quantité de tissu dévitalisé au niveau de la plaie, ce qui accroît le risque d’ISO.

Des instruments fins, un éclairage adéquat et une approche planifiée des couches tissulaires réduisent les traumatismes inutiles et favorisent une cicatrisation plus rapide.

Procédures gastro-intestinales chez le chat

Les chats présentent des corps étrangers intestinaux, des invaginations et des lymphomes intestinaux parmi d’autres affections nécessitant une chirurgie gastro-intestinale. Les mêmes protocoles d’isolation du tractus et de changement de gants que chez le chien s’appliquent chez le chat :

• Isoler le segment intestinal avec des pinces ou des bandes avant l’ouverture
• Changer d’instruments et doubler le changement de gants après la fermeture intestinale
• Lavage abondant avant la fermeture abdominale

Anastomose intestinale chez le chat : Le petit diamètre de la lumière intestinale féline rend l’anastomose techniquement plus exigeante. Une manipulation réduite des tissus nécessite une technique précise et des instruments fins. Tout déversement doit être traité par un lavage abondant immédiat.

Chirurgie du pyomètre

Le pyomètre chez le chat nécessite une intervention chirurgicale dans la plupart des cas. L’intégrité utérine détermine la classe de plaie :

• Intact (pyomètre fermé, sans rupture) : classe II ; entrée contrôlée du tractus sous couverture antibiotique
• Rupture : classe III ou IV ; antibiotiques thérapeutiques ; lavage abondant ; la mise en place d’un drain peut être indiquée

La culture peropératoire de l’exsudat utérin guide la sélection des antimicrobiens post-opératoires.

Pour la technique aseptique de base, incluant le maintien du champ stérile peropératoire, la manipulation des instruments et les standards de comportement du personnel applicables à toutes les procédures chirurgicales félines, ce guide couvre le cadre technique peropératoire.

Protection post-opératoire des plaies chez le chat

L’utilisation d’un collier élisabéthain ou d’une combinaison de récupération est obligatoire après toutes les interventions chirurgicales félines où le chat peut accéder à la plaie. Les chats peuvent accéder à des plaies inaccessibles aux chiens : notamment le thorax dorsal, le flanc et de nombreux sites proximaux des membres.

Pourquoi cela importe plus chez le chat que chez certains chiens :

• Les chats sont des toiletteurs persistants et motivés
• La langue du chat est barbelée et plus abrasive que celle du chien
• Les chats accèdent souvent à des plaies que les propriétaires croient inaccessibles
• Le risque d’ingestion d’antiseptique résiduel est éliminé par l’utilisation du collier élisabéthain

Le collier élisabéthain doit dépasser d’au moins 2 à 3 cm la pointe du nez. Les chats sont particulièrement habiles à contourner les collerettes plus courtes.

Pour l’asepsie lors de la chirurgie des tissus mous chez le chien à titre de comparaison, incluant le protocole d’asepsie des tissus mous canins avec tableau de classification des plaies et considérations spécifiques au tractus, ce guide couvre en détail l’équivalent canin.

Questions fréquemment posées

Le protocole d’asepsie pour l’OHH féline est-il différent de la stérilisation canine ?

Le protocole de base est le même : rasage immédiat préopératoire, friction antiseptique centrifuge en trois passages, blouse et gants stériles, drapage stérile, instruments stériles. Les différences sont spécifiques aux agents (exigences de dilution du CHG pour les chats) et anatomiques (options d’approche par le flanc vs. médiane chez le chat). Pour un chat jeune et sain subissant une OHH élective, les exigences d’asepsie sont identiques en principe à celles d’un chien.

Le CHG peut-il être utilisé pour l’irrigation des plaies chez le chat en post-opératoire ?

Uniquement à une concentration de 0,05 % ou moins. Le CHG concentré est toxique pour les tissus. La dilution à 0,05 % (1 mL de CHG 5 % pour 99 mL d’eau stérile ou de sérum physiologique) est dans la plage sûre. Les concentrations plus élevées ne doivent pas être appliquées sur des plaies ouvertes ou des cavités corporelles chez le chat.

Les cas de chirurgie des tissus mous félins doivent-ils être programmés avant ou après les cas canins ?

Dans la mesure du possible, les cas félins bénéficient d’une programmation en début de journée chirurgicale pour minimiser le stress lié aux bruits et odeurs de l’hôpital. Du point de vue de l’asepsie, programmer les cas contaminés (toutes espèces confondues) en dernier protège l’environnement du bloc opératoire pour les cas propres suivants.

La pose de cathéter urinaire pré- ou peropératoire est-elle pertinente pour le risque d’ISO ?

Oui. La cathétérisation urétrale préopératoire comporte un risque d’ISO si elle est réalisée sans technique aseptique. La cathétérisation peropératoire (par exemple pour une cystotomie) doit être effectuée en utilisant une technique stérile, et le site du cathéter doit être maintenu hors du champ stérile. Les cathéters urinaires post-opératoires sont un facteur de risque documenté d’ISO chez le chat et doivent être retirés dès que cliniquement possible.

Pour les standards d’asepsie chirurgicale qui fournissent le cadre complet d’asepsie périopératoire en cinq domaines sous-jacent à ces directives spécifiques, ce guide couvre la norme complète d’asepsie chirurgicale.

L’exécution cohérente du protocole d’asepsie des tissus mous félins nécessite de reconnaître quelles catégories d’erreurs sont les plus probables dans ce contexte clinique spécifique, notamment les erreurs de concentration du CHG, les micro-abrasions dues à une pression excessive lors du rasage, et l’utilisation insuffisante du collier élisabéthain en post-opératoire.

Pour les erreurs courantes spécifiques aux procédures des tissus mous félins, incluant les catégories d’erreurs les plus fréquemment rencontrées en chirurgie des petits animaux avec une pertinence particulière pour les cas félins, ce guide couvre la taxonomie des erreurs.

La chirurgie des tissus mous félins exige le même standard d’asepsie que la chirurgie canine, appliqué avec conscience des différences de sensibilité aux agents, de fragilité tissulaire, des effets immunitaires liés au stress et du comportement de toilettage post-opératoire. Obtenir la bonne concentration de CHG, utiliser des instruments finement adaptés, minimiser le stress préopératoire et imposer l’utilisation du collier élisabéthain en post-opératoire sont les variables spécifiques au félin en plus du protocole d’asepsie standard que chaque patient félin subissant une chirurgie des tissus mous mérite.

Ressources

Les sources suivantes ont été utilisées comme références et pour le contexte de cet article :

• NIH/PMC. Incidence of SSI in dogs undergoing soft tissue surgery: risk factors and economic impact.pmc.ncbi.nlm.nih.gov
• NIH/PMC. Effectiveness of two scrub methods with different chlorhexidine combinations for surgical field antisepsis in cats.pmc.ncbi.nlm.nih.gov
• ATDove. Surgical Site Infection.atdove.org
• The Veterinary Nurse. Surgical site infections: preparation, technique and perioperative prevention.theveterinarynurse.com
• ABCD Cats and Vets. Guideline for Disinfectant Choice in Feline Veterinary Hospitals.abcdcatsvets.org